Avaliação do bem-estar animal quanto ao nível de amônia no microambiente para camundongos Swiss Webster em biotério
Vigil Sanit Debate, Rio de Janeiro, 2025, v.13: e02356 | Publicado em: 04/12/2025
DOI:
https://doi.org/10.22239/2317-269X.02356Palavras-chave:
Camundongos, Microambiente, Experimentação Animal, Amônia, Bem- Estar AnimalResumo
Introdução: O camundongo (Mus musculus) é uma das espécies mais utilizadas para fins didáticos e científicos, devido a características que o tornam adequado ao uso nas pesquisas científicas: tamanho corporal, facilidade de manuseio, prolificidade, ciclo de vida curto, além da similaridade biológica e genética, que o aproxima do ser humano em 70 a 90%. Além disso, tem o olfato acurado, pois seu bulbo olfatório é proporcionalmente grande quando comparado com o encéfalo. Objetivo: Avaliar a eficiência da relação entre a periodicidade de “troca de gaiolas” e o piso/cama de maravalha ou flocos de pinus utilizado, para determinar a qualidade do microambiente e seu impacto direto no bem-estar de camundongos mantidos em um biotério de experimentação de status sanitário convencional. Método: Este artigo avaliou a qualidade do ar no microambiente dos camundongos por meio do nível da concentração de amônia, a eficiência de absorção de amônia pelos pisos/camas na “troca de gaiolas” e o teste de espécies reativas de oxigênio (ERO). Resultados: Microambientes com quatro indivíduos machos adultos atingem concentrações elevadas de amônia, ainda que inferior a 25 ppm (valor padrão), em ambos os tipos de piso/cama. A troca das gaiolas uma vez por semana mostrou-se imprópria para a manutenção dos indivíduos, já na 5ª semana de vida. Infere-se que a frequência de troca duas vezes por semana não induz ao desconforto ou estresse em biotério sobre o piso/cama de maravalha. Conclusões: Os valores de concentração de amônia são influenciados diretamente pelo tipo de piso/cama e a frequência de “troca de gaiolas”.
Downloads
Biografia do Autor
-
Miguel Ângelo Brück Gonçalves, Centro de Experimentação Animal, Fundação Oswaldo Cruz (Fiocruz), Rio de Janeiro, RJ, Brasil
-
Valdeci de Souza Pessanha, Laboratório de Biologia Celular, Fundação Oswaldo Cruz (Fiocruz), Rio de Janeiro, RJ, Brasil
-
Gabriel Melo de Oliveira, Laboratório de Biologia Celular, Fundação Oswaldo Cruz (Fiocruz), Rio de Janeiro, RJ, Brasil
-
Octavio Augusto França Presgrave, Instituto de Ciência e Tecnologia em Biomodelos, Fundação Oswaldo Cruz (Fiocruz), Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Referências
1. Andrade A, Pinto SC, Oliveira RS, organizadores. Animais de laboratório: criação e experimentação. Rio de Janeiro: Fundação Oswaldo Cruz; 2002.
2. Oliveira GM, Brück MA, Martins TVA. Enriquecimento ambiental: qual amelhor forma de utilização do enriquecimento ambiental para camundongos em biotério? Rio de Janeiro: Fundação Oswaldo Cruz; 2018.
3. Ministério da Ciência, Tecnologia e Inovação (BR). Lei Nº 11.794, de 8 de outubro de 2008. Estabelece procedimentos para o uso científico de animais. Diário Oficial União. 9 out 2008.
4. Ministério da Ciência, Tecnologia e Inovação (BR). Decreto Nº 6.899, de 15 de julho de 2009. Dispõe sobre a composição do Conselho Nacional de Controle de Experimentação Animal - Concea, estabelece as normas para o seu funcionamento e de sua secretaria-executiva, cria o cadastro das instituições de uso científico de animais - Ciuca, mediante a regulamentação da Lei Nº 11.794, de 8 de outubro de 2008, que dispõe sobre procedimentos para o uso científico de animais, e dá outras providências. Diário Oficial União. 16 jul 2009
5. Ministério da Ciência, Tecnologia e Inovação (BR). Guia brasileiro de produção, manutenção ou utilização de animais em atividades de ensino ou pesquisa científica. Brasília: Ministério da Ciência, Tecnologia e Inovação; 2023[acesso 30 ago 2023]. Disponível em: www.gov.br/mcti/pt-664 br/composicao/conselhos/concea/arquivos/arquivo/publicacoes-do-665 concea/guia_concea_1ed_animais-_ensino_ou_pesquisa_2023.pdf
6. Bravin JS, Maciel-Magalhães M, Pinheiro YSG, Gonçalves MAB, Ferraris FK, Amendoeira FC. Importância da inserção de grupo controle em ensaios utilizando animais de laboratório. Vigil Sanit Debate. 2021;9(1):117-122.https://doi.org/10.22239/2317-269x.01433
7. Silva CC, Oliveira CBN, Carneiro PS, Marengo EB, Mattos KA, Almeida RSC et al. Métodos alternativos para a detecção de pirogênios em produtos e ambientes sujeitos a vigilância sanitária: avanços e perspectivas no Brasil a partir do reconhecimento internacional do teste de ativação de monócitos. Vigil Sanit Debate. 2018;6(1):137-49.https://doi.org/10.22239/2317-269X.01082
8. Agência Nacional de Vigilância Sanitária – Anvisa. Resolução RDC Nº 136, de 23 de maio de 2003.dispõe sobre registro de medicamento novo. Diário Oficial União. 24 maio 2003.
9. Morais ACN, Cabral CC, Dias AVAB, Araújo MG, Mattos GLM, Moreira WC. Comparação de períodos de observação no teste de inoculação em camundongos para o isolamento do vírus da raiva. Vigil Sanit Debate. 2015;3(3):47-55.https://doi.org/10.3395/2317-269x.00223
10. Evangelista AA, Costa SM, Rossi MID, Oliveira GM. Wild mouse & laboratory mouse historical aspects, genetic selection and welfare. Rev Soc Bras Cienc Anim Lab. 2019;7(2):122-9.
11. Alcock J. Animal behavior, an evolutionary approach. 5a ed. Sunderland: Sinauer; 1993.
12. Graeff FG, Guimarães FS. Fundamentos de psicofarmacologia. São Paulo: Atheneu; 1999.
13. Suckow MA, Danneman P, Brayton C. The laboratory mouse. Boca Raton: CRC; 2001.
14. Gamble MR, Clough G. Ammonia build-up in animal boxes and its effect on rat tracheal epithelium. Lab Anim. 1976;10(2):93-104.https://doi.org/10.1258/002367776781071477
15. Harris AN, Lee HW, Osis G, Fang L, Webster KL, Verlander JW et al. Differences in renal ammonia metabolism in male and female kidney. Am J Physiol Renal Physiol. 2018;315(2):F211-22.https://doi.org/10.1152/ajprenal.00084.2018
16. Ferrecchia CE, Jensen K, Van Andel R. Intracage ammonia levels in static and individually ventilated cages housing c57bl/6 mice on 4 bedding substrates. J Am Assoc Lab Anim Sci. 2014;53(2):146-51.
17. Burn CC, Mason GJ. Absorbencies of six different rodent beddings: commercially advertised absorbencies are potentially misleading. Lab Anim. 2005;39(1):68-74.https://doi.org/10.1258/0023677052886592
18. Silva AA, Gonçalves RC. Espécies reativas do oxigênio e as doenças respiratórias em grandes animais. Cienc Rural. 2010;40(4):994-1002.https://doi.org/10.1590/S0103-84782010005000037
19. Comhair SA, Erzurum SC. Antioxidant responses to oxidant-mediated lung diseases. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2002;283(2):L246-55.https://doi.org/10.1152/ajplung.00491.2001
20. Memarzadeh F, Harrison PC, Riskowski GL, Henze T. Comparison of environment and mice in static and mechanically ventilated isolator cages with different air velocities and ventilation designs. Contemp Top Lab Anim Sci. 2004 Jan;43(1):14-20.
21. Washington IM, Payton ME. Ammonia levels and urine-spot characteristics as cage-change indicators for high-density individually ventilated mouse cages. J Am Assoc Lab Anim Sci. 2016;55(3):260-7.
22. Balls M, Goldberg AM, Fentem JH, Broadhead CL, Burch, RL, Festing MF et al. The three Rs: the way forward: the report and recommendations of ECVAM workshop 11. Altern Lab Anim. 1995;23(6):838-66.
23. Furtado AK, Oliveira G.M. Análise Biométrica relacionada a importância do bem-estar de camundongos e a influência nos resultados dos ensaios científicos. Rev Soc Bras Cienc Anim Lab. 2018;6(2):111-28.
24. Moberg GP. Biological response to stress: implications for animal welfare. In: Moberg GP,Mench JA, editors. The biology of animal stress: basic principles and implications for animal welfare. New York: CABI;2000[acesso 20 jun 2020]. Disponível em:https://doi.org/10.1079/9780851993591.0001
25. Sterling P, Reason J. Allostasis: a new paradigm to explain arousal pathology. In: Fisher S, Reason J, editors. Handbook of life stress, cognition and health. Hoboken: John Wiley & Sons; 1988.
26. Sapolsky RM, Romero LM, Munck AU. How do glucocorticoids influence stress responses? Integrating permissive, suppressive, stimulatory, and preparative actions. Endocr Rev. 2000;21(1):55-89.https://doi.org/10.1210/edrv.21.1.0389
27. Ülgen DH, Ruigrok SR, Sandi C. Powering the social brain: mitochondria in social behaviour. Curr Opin Neurobiol. 2023;79.https://doi.org/10.1016/j.conb.2022.102675
28. Turrens JF. Mitochondrial formation of reactive oxygen species. J Physiol. 2003;552(Pt.2):335-44.https://doi.org/10.1113/jphysiol.2003.049478
29. Ghavami S, Shojaei S, Yeganeh B, Ande SR, Jangamreddy JR, Mehrpour M et al. Autophagy and apoptosis dysfunction in neurodegenerative disorders. Prog Neurobiol. 2014;112:24-49.https://doi.org/10.1016/j.pneurobio.2013.10.004
30. Miranda Mendonça AP, Hoppe LY, Gaviraghi A, Araújo-Jorge TC, de Oliveira GM, Felippe RM et al. Highly aggressive behavior induced by social stress is associated to reduced cytochrome c oxidase activity in mice brain cortex. Neurochem Int. 2019;126:210-17.https://doi.org/10.1016/j.neuint.2019.03.017
Downloads
Publicado
Declaração de Disponibilidade de Dados
Os conteúdos de dados da pesquisa do texto do manuscrito estão disponíveis no site do MESTRADO PROFISSIONAL EM CIÊNCIA EM ANIMAIS DE LABORATÓRIO (MPCAL), link: https://drive.google.com/file/d/1M_SZLN-MfuUCsZuuHHXkjUp3Uz-UKKyO/view em sua totalidade e sem restrições.
Licença
Copyright (c) 2025 Vigilância Sanitária em Debate
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.
TERMO DE CESSÃO DE DIREITOS AUTORAIS O(s) autor(es) doravante designado(s) CEDENTE, por meio desta, cede e transfere, de forma gratuita, a propriedade dos direitos autorais relativos à OBRA à REVISTA Vigilância Sanitária em Debate: Sociedade, Ciência & Tecnologia (Health Surveillance under Debate: Society, Science & Technology) – Visa em Debate e, representada por FUNDAÇÃO OSWALDO CRUZ, estabelecida na Av. Brasil, nº 4365, Manguinhos, Rio de Janeiro, RJ, Brasil, CEP 21045-900, doravante designada CESSIONÁRIA, nas condições descritas a seguir: 1. O CEDENTE declara que é (são) autor(es) e titular(es) da propriedade dos direitos autorais da OBRA submetida. 2. O CEDENTE declara que a OBRA não infringe direitos autorais e/ou outros direitos de propriedade de terceiros, que a divulgação de imagens (caso as mesmas existam) foi autorizada e que assume integral responsabilidade moral e/ou patrimonial, pelo seu conteúdo, perante terceiros. 3. O CEDENTE cede e transfere todos os direitos autorais relativos à OBRA à CESSIONÁRIA, especialmente os direitos de edição, de publicação, de tradução para outro idioma e de reprodução por qualquer processo ou técnica. A CESSIONÁRIA passa a ser proprietária exclusiva dos direitos referentes à OBRA, sendo vedada qualquer reprodução, total ou parcial, em qualquer outro meio de divulgação, impresso ou eletrônico, sem que haja prévia autorização escrita por parte da CESSIONÁRIA. 4. A cessão é gratuita e, portanto, não haverá qualquer tipo de remuneração pela utilização da OBRA pela CESSIONÁRIA.
